FAQ

Kot- und Blutproben sollten möglichst innerhalb von 60 Min. verarbeitet werden. Eine Zwischenlagerung, je nach Probenmatrix, durch kühlen oder einfrieren ist möglich. Siehe hierzu: Lagerung & Handhabung

Die hellblauen Linien sind für die interne Qualitätskontrolle wichtig und können zudem dem Anwender als Hilfslinien dienen (Ort, an dem die Linien entstehen). Sie werden während des Testlaufs ausgewaschen, ohne Einfluss auf den Test. Der Test ist verwendbar.

Ja, auch eine schwache T-Linie gilt als positiv. Die Intensität der Kontrolllinie (C) korreliert nicht mit der Testlinie.

Bei Verdacht auf Temperaturexposition außerhalb 2-30 °C: Test mit (sofern vorhanden) Kontrollprobe oder Laufpuffer prüfen. Bei Ausfall der C-Linie oder atypischem Laufverhalten nicht verwenden.

Es sollte nur die Wattekopfspitze mit einer dünnen Kot-Schicht bedeckt sein. Homogenisieren Sie hierzu die Kotprobe (z.B. mittels Holzspatel) und betupfen sie min. 3 Stellen oberflächlich mit der Wattekopfspitze. Zu viel Kot kann den Testlauf blockieren oder den Hintergrund gelblich-bräunlich verfärben.

Max. 5 Minuten. Besser: Wattestabkopf mit Kot gut im Puffer verrühren und die frische Lösung direkt auf den Test geben.

Ja, besonders bei krümeligem Kot ist dies möglich und eine gute Hilfe. Das Material haftet so besser am Wattestab und lässt sich leichter übertragen.

• Kot im Kühlschrank (4–8 °C) max. 3 Tage lagern, für längere Zwischenlagerung einfrieren
• Serum/Plasma bis 48 h gekühlt stabil, für längere Zwischenlagerung einfrieren
• Vollblut bis 48 h ausschließlich gekühlt stabil, einfrieren nicht möglich

• Unter 2°C oder über 30°C kann Testleistung und Pufferwirkung beeinträchtigen.
• Vor Testbeginn auf Raumtemperatur bringen. Zu kalte Tests können schwache oder verzögerte Linien verursachen.

Nach Öffnen und Anmischen innerhalb von 30 Minuten verwenden. Alte Pufferflüssigkeit kann Testlauf beeinflussen.

Wenn Proben transportiert werden müssen, gekühlt lagern, um Antigenstabilität zu erhalten.

Zur Vermeidung eines Vollblutdurchbruchs oder einer Blockierung des Tests, warten Sie bis das Blut vollständig eingezogen ist, bevor der Laufpuffer zugegeben wird. Gerade bei sehr dicken oder zähflüssigen Blut kann eine zu frühe Zugabe den Test stören.

Die Nutzung kann eine Hintergrundfärbung verursachen und so die Auswertung erschweren und die Ergebnisse beeinflussen. Lipämische Proben können die Testergebnisse beeinflussen, da das Fett die Ag/AK-Kopplung blockieren kann, was falsch-negative Ergebnisse erzeugen kann.

Chemisch behandeltes Streu im Proben-Puffer-Gemisch kann den Test verfälschen, daher sollte eine Probennahme aus kontaminierten Bereichen vermieden werden. Besser: Spalten Sie die Kotprobe mittig und nehmen Sie die Probe aus dem inneren.

Mögliche Ursachen: zu dickflüssige Probe, zu große Menge, Schleim/Verunreinigungen.

Lösung:

• Kotprobe: Wattestabspitze nur oberflächlich abtupfen, ggf. klare Pufferflüssigkeit nachtröpfeln.
• Serum: keine hämolytischen, lipämischen oder ikterischen Proben testen.
• Vollblutproben: Chance geben, dass dieses vollständig in das Probenfeld einzieht bevor Puffer zugegeben wird. (Verzögerungen können sich bei dickflüssigem Blut ergeben).

Hinweis auf zu viel Kot. Verdünnen oder weniger Material verwenden, um sauberen Lauf zu ermöglichen und braune Linien zu vermeiden. Alternativ die Pufferflasche auf den Kopf stellen, die schweren Bestandteile sedimentieren lassen und den ersten Tropfen verwerfen.

Der Test ist ungültig, bitte wiederholen Sie den Test. Achten Sie auf Auffälligkeiten bei der Probe oder während des Testlaufs.

Ergebnisse genau im angegebenen Zeitfenster ablesen. Zu spätes Ablesen führt häufig zu unspezifischen Schattenlinien (Verdunstungsartefakte!).

• Nur Linien, die innerhalb des 10-Minuten-Fensters erscheinen UND bestehen bleiben, sind gültig.
• Linien, die vor Ablauf verschwinden oder erst nach 10 Minuten auftreten, sind nicht zu werten.

• Proben-Puffer-Gemisch ist zu dickflüssig, weshalb ein sauberer Lauf erschwert, wird
  • Lösung: Wattestabkopf nicht vollständig in den Kot eintauchen, sondern mehrere Stellen oberflächlich abtupfen, sodass nur die Spitze bedeckt ist.
• Falscher Testzeitpunkt: Probe wurde an dem Zeitpunkt genommen, wenn die Erkrankung noch nicht oder nicht mehr nachweisbar ist, z.B. FeLV (Antigene erst 2 bis 4 Wochen nach Infektion nachweisbar) oder CPV/FPV (sehr kurzer Ausscheidungszeitraum ca. 3-10 Tage)
• Testung direkt nach einer Behandlung: z.B. werden abgetötete Giardien nach einer Behandlung noch ca. 3 Wochen vom Tier ausgeschieden. Schnelltests unterscheiden nicht nach lebendigen oder toten Giardien.
• Lebendimpfstoffe wie z.B. gegen Parvovirus können vom Antigentest noch bis zu 3 Wochen später erkannt werden.

• Falscher Testzeitpunkt: Die Bildung von Antikörper nach einer Infektion können je nach Erreger unterschiedlich lang dauern (vgl. Reisekrankheiten)
• Je nach Impfstoff (besonders bei Lebendimpfstoffen) nicht direkt testen! Die Serokonversion braucht Zeit (meist 3–4 Wochen nach letzter Dosis).

• Sensitivität: Fähigkeit, kranke Tiere korrekt als positiv zu erkennen.
• Spezifität: Fähigkeit, gesunde Tiere korrekt als negativ zu erkennen.
• TTP: Gesamtzuverlässigkeit des Tests, berücksichtigt Sensitivität und Spezifität.

• Kot + Urin oder andere Substanzen → unerwartete Reaktionen, Testlauf gestört.

• Lipämisch, hämolytisch oder ikterisch: Kann Hintergrundfärbung verstärken und/oder Lauf stören und somit Auswertung erschweren.
• Bröckeliger oder sehr krümeliger Kot: Puffer anfeuchten, um Material auf Wattestab aufzunehmen.

Katzenstreu, Einstreu/Bodenpartikel oder Futterreste → Testlinie verfälscht. Immer reine Kotproben verwenden.

• Einige Tiere (Giardia, Parvo, FeLV) können Antigene oder Antikörper länger oder intermittierend ausscheiden.
• Interpretation erfordert ggf. mehrere Tests über Zeit.

• Nach Lebendimpfstoffgabe kann Antigentest vorübergehend positiv sein.
• Wartezeit nach Lebendimpfung: Ag-Tests (z. B. Parvo): mind. 2-3 Wochen; AK-Tests: ca. 2-4 Wochen, je nach Impfstoff.

• Cryptosporidien oder Giardia → Mensch kann ebenfalls infiziert werden. Hygiene beachten.

• Häufig sind die Mikroporen der Nitrocellulosemembran verstopft oder es wurde zu viel Kot auf das Probenfeld aufgebracht. Hinweis: Manche Sample-Pads sind dicker und können dickflüssige Proben oder zu viel Material schlechter filtern.

• Bei Kotproben empfiehlt es sich, die Probe vor der Aufnahme kurz zu homogenisieren (z.B. mit Holzspatel)
• Vorteil: Wahrscheinlichkeit Antigene in Probe tatsächlich zu beproben erhöht sich.

• Zu viel Kot/Puffer-Gemisch kann Testlinie verfälschen und/oder Lauf behindern; zu wenig kann zu falsch-negativen Ergebnissen führen.
• Tipp: Immer die Wattestabspitze benetzen, nicht vollständig eintauchen.

• Bei sehr flüssigem Durchfall kann Virus/Antigen ausgewaschen werden → Test zunächst negativ, obwohl Infektion besteht.
• Lösung: nach flüssigem Durchfall 30 Minuten warten und festere Kotbestandteile verwenden (→ Verdünnungseffekt).

• Handschuhe verwenden, Probengefäße sauber halten.
• Kreuzkontamination (z.B. zwischen Tieren) kann falsch-positive Ergebnisse erzeugen.

• Schwache, aber innerhalb des Ablesezeitraums sichtbare T-Linien gelten als positiv. Bei schwacher Linie und fehlendem klinischem Verdacht: Wiederholungstest und/oder Bestätigungsdiagnostik (z.B. PCR, Western Blot) erwägen.
• Intensität der Kontrolllinie hat keinen Einfluss auf oder Bedeutung für Testlinie.

• Bei Verdacht auf chronische oder wiederkehrende Infektion kann es sinnvoll sein Differenzial-Erreger sicherheitshalber zu testen (Beispiel: Giardia und CPE oder Giardia und Cryptosporidien).
• Beispiel: Giardia oder Parvo – negativer Einzeltest bedeutet nicht zwingend „kein Erreger vorhanden“.

• Viele Antigen-/Antikörpertests haben bestimmte Zeitfenster, in denen Infektion nachweisbar ist.
  
  • z.B. Parvovirus Antigen: Zeitraum ca. 7-10 Tage, Ausscheidung Viren 3-4 Tage nach Infektion und vor dem Auftreten der Symptome
  • z.B. Distempervirus Antigen: 3-4 Tage im infektiösen Blut und anschließend ca. 3 Tage danach im Kot nachweisbar
• Zu frühe Tests → falsch-negative Ergebnisse.
• Zu späte Tests (z.B. nach Virus-Ausscheidung) → ebenfalls falsch-negativ.

• Besonders nach Behandlung oder Impfung sinnvoll, um Verlauf zu beobachten.
• Aber Vorsicht: Lebendimpfstoffen können von Schnelltests erkannt werden (z.B. Parvovirus Antigen nach Impfung). Wartezeit beachten!